Забор других материалов для микробиологических и молекулярнодиагностических (DNA) исследований

 См. также  Забор материалов для молекулярнодиагностических (DNA) исследований

См. также  Оснащение для микробиологических исследований 

Соскоб (эпителиальных клеток) из цервикального канала

  • Материал для проведения анализа берется стерильным тампоном.
  • Первым тампоном с зева цервикального канала удаляется слизистая пробка.
  • Материал на исследование берется вторым тампоном с глубины цервикального канала 1-2 см, поворачивая тампон вдоль внутренней стенки цервикального канала не менее 10 раз. 
  • Для  проведения  исследования  на  наличие  HPV  забор  материала  происходит  с  помощью цитологической щеточкой с глубины 1 см.
  • Для посева на исследование наличия микоплазм материал берется в специальную систему посева.
  • Маркировать посуду.

 

Соскоб из уретры

  • Материал для проведения анализа берется стерильным тампоном с тонким алюминиевым стержнем.
  • У мужчин тампон вводится на глубину 4 см у женщин на глубину 1-2 см в уретру и ротируется вдоль стенки слизистой оболочки.
  • Для посева на исследование наличия микоплазм материал берется в специальную систему посева.
  • Маркировать посуду.

 

Соскоб из влагалища

  • Стерильным тампоном следует провести по слизистой оболочке влагалища и круговым движением произвести забор влагалищных выделений с задней складки влагалища и/или с цервикального канала.
  • Для посева на исследование наличия микоплазм материал берется в специальную систему посева. 
  • Маркировать посуду.

 

Сперма

  • Материал для проведения анализа получают путем мастурбации в стерильную герметично закрывающуюся посуду.
  • Если для исследования используется семенная плазма, то эякулят должен постоять при комнатной температуре или в термостате (+37°C) и затем центрифугировать. Надосадочную жидкость следует отделить от осадка в чистую посуду и поместить в холодильник.
  • Маркировать посуду.

 

Соскоб из носовых ходов

  • Материал для проведения анализа берется стерильным тампоном. У детей можно использовать тампон с тонким алюминиевым стержнем.
  • Тампон ввести вдоль носовой перегородки на глубину 5-7 см в направлении мочки уха, ротируя его по направлению к слизистой оболочке.
  • Материал для исследования наличия носительства MRSA берется из преддверий обоих носовых ходов.
  • Маркировать посуду.  

 

Соскоб со стенки глотки

  • Материал для проведения анализа берется стерильным тампоном.
  • Материал для исследования берется утром до проведения туалета полости рта и еды.
  • Тампоном провести по местам с воспалением и налетом в области миндалин, задней стенке глотки и дужкам.
  • При взятии материала избегать соприкосновения тампона со слизистой рта.
  • Маркировать посуду.

 

Мокрота

  • Материал для проведения анализа берется в стерильную посуду с закручивающейся крышкой. Для исследования не подходит материал, взятый тампоном!
  • Забор материала производится утром, следует прополоскать рот кипяченой водой и откашлять мокроту в стерильную посуду.
  • Для проведения микробиологических анализов сначала из взятого материала изготовляется препарат, окрашенный по Граму. Если в препарате при 100 × увеличении в одном поле клеток плоского эпителия более >10, а полиморфонуклеарных лейкоцитов меньше <10, то материал оценивается, как слюна и микробиологический посев не производится.
  • Если необходимо исследование, как на аэробные бактерии, так и на микобактерии, то материал следует посылать в двух разных контейнерах для сбора мокроты.
  • Маркировать посуду.

 

Аспират из трахеи

  • Материал для проведения анализа берется в стерильную посуду с закручивающейся крышкой.
  • Материал посылается из первой порции аспирата из трахеи стерильным зондом. Если выделений секрета мало, то в дыхательные пути можно предварительно ввести 2 mL физиологического раствора.
  • Маркировать посуду.

 

Бронхоальвеолярный лаваж, аспират из бронхов, амниотическая жидкость, ликвор

  • Материал для проведения анализа берется в стерильную пробирку без добавок или в стерильную посуду с закручивающейся крышкой.
  • Маркировать посуду.  

 

Соскоб с конъюнктивы

  • Материал для анализа берется стерильным тампоном с тонким алюминиевым стержнем.
  • При заборе материала тампоном следует провести по конъюнктиве нижнего века, избегая соприкосновения с ресницами и кожей.
  • Маркировать посуду.

 

Отделяемое из уха, отделяемое из среднего и внешнего уха

  • Материал для анализа берется стерильным тампоном с тонким алюминиевым стержнем.
  • Слуховой проход следует очистить антисептическим средством и произвести забор отделяемого через стерильное ушное зеркало.
  • Маркировать посуду.

 

Отделяемое из раны, гной

  • Материал для анализа берется стерильным тампоном. 
  • Участок раны следует очистить физиологическим раствором, при необходимости удаляя некротизированные ткани и по возможности глубже производя забор материала.
  • Маркировать посуду.

 

Отделяемое из язвы, соскоб из язвы, содержимое волдыря, соскоб кожи

  • Материал для анализа берется стерильным тампоном.
  • Маркировать посуду.

 

Биопсийный материал, клещ (взятый целиком или его часть)

  • Материал для анализа берется в стерильную пробирку без добавок тампоном.
  • Маркировать посуду.

 

Грудное молоко

  • Материал для проведения анализа берется в стерильную посуду с закручивающейся крышкой.  
  • Предварительно грудь следует вымыть теплой водой с мылом и выдавить несколько капель молока, предотвращая тем самым возможную контаминацию, и после этого собрать необходимое количество молока в предназначенную посуду.
  • Маркировать посуду.

 

Плевральная, внутрисуставная жидкость. Жидкость брюшной полости

  • Для молекулярно-диагностического исследования материал берется в стерильную пробирку без добавок или в стерильную посуду с закручивающейся крышкой.
  • Для взятия материала для проведения микробиологического исследования следует использовать стерильный стаканчик.
  • Для микробиологического исследования можно использовать специальную систему посева BACTEC.
  • Очистить пунктируемый участок дезинфицирующим средством, аспирировать жидкость шприцом и сразу же поместить ее в предназначенную посуду.
  • До помещения материала в бутыль системы BACTEC, при удалении пробки необходимо очистить поверхность дезинфицирующим средством.
  • После помещения материала в бутыль системы BACTEC следует круговыми движениями смешать взятый материал со средой в бутыли.
  • Бутыли для посева системы BACTEC следует хранить и транспортировать при комнатной температуре.
  • Маркировать посуду.

Взятие материала для молекулярной диагностики дерматофитов

  • Подготовка к процедуре взятия пробного материала: Непосредственно перед взятием пробного материала нужно избегать использование кремов и лекарственных препаратов на повреждённом месте.  Перед взятием пробы повреждённое место можно при необходимости продезинфицировать 70% алкоголем.

  • Забор пробного материала: Пробный материал нужно собрать в чёрный бумажный конверт. Затем положите чёрный конверт с пробным материалом в конверт с данными о пациенте. 

  • Хранение пробного материала: Собранный пробный материал можно хранить при комнатной температуре в сухом месте до 7 дней, при температуре 2-8° С до 14 дней. Транспорт при комнатной температуре или в охладнённом виде.

  • Соскоб кожи: Стерильным тупым скальпелем соскрести роговой слой кожи (чешуйки) со всей повреждённой поверхности кожи, особенно с краёв очага. При наличии нескольких очагов, желательно взять пробу с края самого свежего, активно распространяющегося, очага.

  • Ногти: Состригите свободный край ногтя пациента. Для анализа требуется часть ногтя, максимально приближённая к телу. При поверхностной инфекции сделать соскрёб тупым скальпелем в области кутикулы или в области поверхностной части ногтевой пластины. При уплотнении ногтя материал собрать под ободком ногтя и в области кутикулы.

  • Волосы: Тупым стерильным скальпелем сделать соскрёб в очаге повреждения (предпочтительно край очага повреждения), далее собрать соскрёб с кожи и повреждённые корни волоса. Если во время соскрёба не удалось собрать повреждённые корни волос, то с помощью пинцетов выдернуть несколько волосков из очага повреждения, следя за тем, чтобы корень волоса также удалось выдернуть.  Для лаборатории важен прежде всего корень волоса, при этом просим подрезать длинные волосы (длинной до 1-2 см). Повреждённые волосы легче собрать с помощью лампы Woodi.