Hingamisteede infektsioonide diagnostika

Hingamisteede viirusinfektsioonid on ühed sagedasemad infektsioonhaigused mida esineb lastel keskmiselt 4-6 ja täiskasvanutel 1-3 episoodi aastas. Kuigi need võivad esineda aastaringselt on nakatumise sagedus enamike viiruste puhul kõrgeim sügisest kevadeni. Enamasti kulgeb haigus kerge ülemiste hingamisteede rinosinusiidina (nn külmetushaigus), kuid haaratud võivad olla ka alumised hingamisteed (bronhiit, bronhioliit, kopsupõletik e pneumoonia). Viirusinfektsiooni tüsistustena võivad tekkida hingamispuudulikkus või mingi bakteriaalne superinfektsioon (bakteriaalne rinosinusiit, keskkõrvapõletik, kopsupõletik jne)

Hingamisteede bakteriaalsed patogeenid põhjustavad infektsioone nii ülemistes (rinosinusiit, keskkõrvapõletik) kui ka alumistes hingamisteedes (bronhiit, kopsupõletik).

Kuigi haigussümptomite alusel on mõnikord võimalik eristada viiruslikke ja bakteriaalseid hingamisteede infektsioone võib täpsustavaks diagnostikaks vaja minna laboratoorseid uuringuid.

Haigustekitaja kindlakstegemine on oluline ravi määramisel nii mitmete viiruslike (gripp, COVID-19) kui enamike bakteriaalsete infektsioonide korral. Lisaks on diagnostika vajalik infektsioonikontrolli ja haiguste epidemioloogilise seire eesmärgil.

Bakteriaalsete hingamisteede infektsioonide diagnostikat ja ravi on käsitletud vastavas Eesti ravijuhendis

Peamiste viiruslike (Tabel 1) ja bakteriaalsete (Tabel 2) haigustekitajate diagnostika, kliinilised nähud, inkubatsiooniajad ning haiguse kestused on toodud tabelites. Peale tabelis loetletud viiruste võivad alumiste hingamisteede infektsioone põhjustada enteroviirused (ehho-ja coxsackie viirused), herpesviirused (lihtherpes, tuulerõuge ja tsütomegaloviirus), bokaviirused ja leetriviirus.

Tabel 1. Viiruslike haigustekitajate diagnostika, leviku teed, kliinilised nähud ja inkubatsiooniajad 

NAT diagnostika Viirus Leviku viis Sündroomid (sümptomid) Riskirühmad Keskmine inkubatsiooniaeg

A-, B-gripi viiruse, RSV, SARS-CoV-2 RNA paneel

 

 

Hingamisteede viiruste RNA/DNA paneel

 

 

 

 

A gripi (e Influenza A) viirus Piisknakkus, ka kontamineeritud käte ja pindadega Gripp, primaarne ja sekundaarne pneumoonia (kõrge palavik, lihasvalu, köha, väsimus) Eakad, rasedad, krooniliste haigustega isikud 1–4 päeva
B- gripi (e Influenza B) viirus Piisknakkus, ka kontamineeritud käte ja pindadega Gripp – sarnane Influenza A-le, kuid tavaliselt kergem Lapsed, eakad, immuunpuudulikkusega isikud 1–4 päeva
RSV (respiratoor-süntsütiaalne viirus) Piisknakkus, lähikontakt Bronhioliit, pneumoonia (köha, vilistav hingamine, palavik) Imikud, eakad, krooniliste haigustega isikud 4–6 päeva
SARS-CoV-2 (raskekujuline respiratoorse sündroomiga koroonaviirus) Piisknakkus, aerosool, pindade kaudu COVID-19, ARDS e äge respiratoorse distressi sündroom (palavik, köha, väsimus, maitse-/lõhnataju kadu, hingamisraskused) Eakad, krooniliste haigustega, immuunpuudulikkusega 5–6 (2–14 ) päeva
  Metapneumoviirus Piisknakkus, lähikontakt Bronhioliit, pneumoonia, rinosinusiit (köha, nohu, palavik, hingamisraskused) Imikud, eakad, immuunpuudulikkusega isikud 3–6 päeva
Paragripi (parainfluenza) viirus Piisknakkus Larüngiit, bronhioliit, krupp, rinosinusiit (köha, nohu, palavik) Imikud, väikelapsed, eakad 2–6 päeva
Adenoviirus Piisknakkus, fekaal-oraalne Farüngiit, gastroenteriit, konjunktiviit (kurguvalu, palavik, silmade punetus, kõhulahtisus) Lapsed, sõjaväelased, immuunpuudulikkusega isikud 2–14 päeva
Rinoviirus Piisknakkus, pindade kaudu Rinosinusiit (nohu, kurguvalu, kerge köha) Kõik vanuserühmad, eriti lapsed 1–3 päeva


Tabel 2. Bakteriaalsete haigustekitajate diagnostika, leviku teed, kliinilised nähud ja inkubatsiooniajad

NAT diagnostika Muud testid Bakter Leviku viis Sündroomid (sümptomid) Riskirühmad Keskmine inkubatsiooniaeg
Chlamydophila pneumoniae, Mycoplasma pneumoniae, Legionella pneumophila DNA paneel Hingamisteede bakterite DNA paneel Antikehad (IgG + IgM + IgA) Mycoplasma pneumoniae Aerosoolid, piisknakkus Bronhiit, bronhioliit, atüüpiline pneumoonia (palavik, peavalu, väsimus, kuiv köha, kurguvalu, nohu) Koolilapsed, noored täiskasvanud, astma või immuunpuudulikkus 2–3 nädalat
Chlamydophila pneumoniae Piisknakkus, kontamineeritud pindadega Bronhiit, atüüpiline pneumoonia (kurguvalu, köha, madal palavik) Koolilapsed, noored, vanemad täiskasvanud korduvate infektsioonidega 3–4 nädalat
Antigeenitest Legionella pneumophila Aerosoolid saastunud veest (konditsioneerid, dušid) Legionelloos, Pontiac palavik (kõrge palavik, köha, hingamisraskused, lihasvalud, peavalu, seedetrakti sümptomid) Eakad, suitsetajad, krooniliste haigustega, immuunpuudulikkusega 5–6 päeva (2–14)
Bordetella pertussis, Bordetella parapertussis DNA paneel IgG ± IgA Bordetella pertussis Piisknakkus Larüngotrahheobronhiit/läkaköha (katarraalne staadium: nohu, köha, palavik, kurguvalu; seejärel paroksüsmaalne staadium: köhahood, oksendamine) Imikud, väikelapsed, madal immuunkaitse 7–10 päeva (5–21)
  Bordetella parapertussis Piisknakkus Paraläkaköha (läkaköha taoline kuid tavaliselt kergem ja lühem paroksüsmaalne köha) Imikud (<6 kuud), sagedamini kergetel juhtudel, immuunpuudulikkusega 7–10 päeva (5–21)
  Aeroobne külv röga proovist Streptococcus pneumoniae Piisknakkus Pneumoonia (kõrge palavik, külmavärinad, rögaeritus, hingamisraskused, rinna valu, väsimus), bakteriaemia, meningiit, keskkõrvapõletik, bakteriaalne rinosinusiit Väikelapsed, eakad, asplenia, immuunpuudulikkus, kroonilised haigused 1–3 päeva
Haemophilus influenzae Piisknakkus Invasiivne serotüüb B: meningiit, epiglotiit, pneumoonia; teised serotüübid: keskkõrvapõletik, bronhiit <5 a lapsed, ≥65 a, asplenia, immuunpuudulikkus, kemoteraapia 2–4 päeva
  Aeroobsed bakterid vt Tabel 3

Laboratoorne diagnostika

Hingamisteede viirusinfektsioonide diagnostikas on eelistatuim NAT (nucleic acid amplification tests) meetod (nagu PCR, RT-PCR). Kuna erinevate viiruste põhjustad sümptomid on sarnased, siis kasutatakse paneeldiagnostikat mis sisaldab olulisemaid ja sagedasemaid haigustekitajaid.

A-, B-gripi viiruse, RSV, SARS-CoV-2 RNA paneel sisaldab viiruseid mis on olulisemad nii epidemioloogiliselt (haiguspuhangud, pandeemiad), kliiniliselt (võimalik raskem kulg ja tüsistused) kui ka ravi ja ennetamise mõttes (olemas ravimid ja vaktsiinid).

Hingamisteede viiruste RNA/DNA paneel sisaldab lisaks eelnevatele (A ja B-gripi viiruse, RSV, SARS-CoV-2) ka teisi sagedamini hingamisteede infektsioone põhjustavaid viiruseid (metapneumo-, paragripi-, adeno- ja rinoviirus)

Proov uuringuks tuleks võtta võimalikult varakult peale sümptomite tekkimist kuna viiruste eritumine organismist on siis reeglina kõrgeim (sümptomitest kuni 5 päevani), sellel ajal on haigestunu ka kõige nakkusohtlikum.

Hingamisteede bakteriaalsete infektsioonide diagnostikas on kasutusel NAT, antikehade/antigeeni määramine ja külv.

Chlamydophila pneumoniae, Mycoplasma pneumoniae, Legionella pneumophilaDNA paneel on esmane diagnostika atüüpilise kopsupõletiku kahtluse korral vastavalt kehtivale Eesti diagnostika ja ravi juhendile

Nimetatud patogeenide korral on NAT diagnostika kõige tundlikum haiguse 1-2 nädala jooksul, hiljem kui haigustekitajate eritumine hingamisteedest väheneb langeb ka meetodi tundlikkus. Soovituslikuks uuringumaterjaliks on röga ja teised alumistest hingamisteedest pärit materjalid (bronhiaspiraat, trahhea aspiraat). Ninaneelu ja kurgu kaapest tehtud uuringud on oluliselt madalama tundlikkusega ning annavad sageli valenegatiivseid tulemusi, mistõttu neid materjale diagnostikaks ei soovitata.

Bordetella pertussis, Bordetella parapertussis DNA paneel on esmane diagnostiline test läkaköha ja paraläkaköha kahtlusel. NAT diagnostika on kõige tundlikum haiguse katarraalses staadiumis (1-2 nädalat alates sümptomitest) ning peale 3 haigusnädalat meetodi tundlikkus oluliselt väheneb. Diagnostika tuleks teostada võimalikult varakult, et saaks koheselt alustada antibakteriaalset ravi. Uuringud on näidanud, et antibiootikumravi kergendab haiguse kulgu kui seda alustada esimese haigusnädala jooksul, kui ravi alustada hiljem aga kuni 3 nädala jooksul, siis see haiguse kulgu ei mõjuta aga võib vähendada patsiendi nakkusohtlikust ja seega haiguse levikut. Hilisem antibiootikumravi (3-6 nädalat peale sümptomite algust) on näidustatud vaid teatud riskirühmadel.

Uuritavateks materjalideks sobivad lisaks rögale ka ninaneelukaabe, ja kurgukaabe.

Hingamisteede bakterite DNA paneel sisaldab lisaks eelnevate paneelide patogeenidele (Chlamydophila pneumoniae, Mycoplasma pneumoniae, Legionella pneumophila, Bordetella pertussis, Bordetella parapertussis) ka tüüpilise kopsupõletiku tekitajaid: Streptococcus pneumoniae ja Haemophilus influenzae. Nimetatud paneel on näidustatud kopsupõletiku jt ägedate bakteriaalsete alumiste hingamisteede infektsioonide diagnostikaks nii iseseisvalt kui ka kombineeritult aeroobse külviga rögast.

Streptococcus pneumoniae ja Haemophilus influenzae uuringud on samuti näidustatud haiguse ägedas staadiumis. Eelistatud on alumistest hingamisteedest pärit uuringumaterjalid (röga, trahhea või bronhiaspiraat), kuid ka neelukaabete tundlikkus ja spetsiifilisus vanematel patsientidel on hea. Kuna lastel on ninaneel sageli koloniseeritud S. pneumoniae ja H. influenzae poolt tuleb neil ninaneelust saadud positiivsetesse tulemustesse suhtuda kriitiliselt.

Mycoplasma pneumoniae IgA, IgG, IgM ja Chlamydophila pneumoniae IgA, IgG, IgM

Antikehade määramine on näidustatud haiguse retrospektiivseks kinnitamiseks kuna antikehad tekivad teiseks – kolmandaks haigusnädalaks. IgA, IgG ja IgM antikehi tuleks määrata alati koos ning vajadusel teostada ka kordusuuring 2-3 nädala pärast, et hinnata antikehade hulkade dünaamikat. Kuna tegemist on kaudse diagnostikaga, mis määrab inimese immuunvastust tuleb tõlgendamisel arvestada ka indiviidi immuunseisundiga. Antikehade määramine ei sobi raviefektiivsuse hindamiseks.

Tulemuse tõlgendamine: IgA tekib nii primaarse- kui reinfektsiooni puhul ning positiivne tulemus viitab käimasolevale või hiljutisele infektsioonile.

IgM positiivne tulemus võib viidata nii käimasolevale kui ka hiljutisele infektsioonile kuid täiskasvanutel reinfektsiooni korral IgM antikehi ei teki ning lastel jääb IgM ka esmasinfektsiooni puhul sageli negatiivseks. IgM püsib keskmiselt 6 kuud.

IgG positiivne tulemus võib viidata nii hiljutisele kui ka varem põetud infektsioonile kuna võib positiivsena püsida aastaid peale haigestumist.

Bordetella pertussis IgA, IgG

Läkaköha toksiinivastaste antikehade määramisel põhinevad uuringud on näidustatud alates 2-3. haigusnädalast kui NAT meetodiga haigustekitajat enam tuvastada ei ole võimalik kuid IgG ja IgA tüüpi antikehad on juba tekkinud. Kuna tegemist on kaudse diagnostikaga, mis määrab inimese immuunvastust, tuleb tõlgendamisel arvestada ka indiviidi immuunseisundiga. Antikehade määramine ei sobi raviefektiivsuse ega paranemise hindamiseks. Uuring ei ole näidustatud kui vaktsineerimisest on möödas alla 1 aasta, kuid ka 1-3 aastat peale vaktsineerimist võib tulemuse tõlgendamine olla problemaatiline. Seetõttu tuleb saatekirjale lisada info nii viimas vaktsineerimise ja kui ka sümptomite alguse kohta.

Tulemuse tõlgendamine: IgG antikehad tekivad alates 2-3 nädalast ja saavutavad maksimaalse hulga 6-8 nädalaks. IgA tekib alates 1-2 haigusnädalast ja püsib keskmiselt 6-24 kuud.

Kui hinnatakse 3-4 nädalase vahega võetud paarisseerumite tulemust, siis PT IgG 100% tõus v langus viitab infektsioonile.

Üksikproovi hindamisel viitab positiivne IgG tulemus infektsioonile ning negatiivse tulemuse korral seroloogiline viide läkaköhale puudub. Piiripealse IgG tulemuse korral tuleks hinnata IgA antikehade taset. Kui piiripealse IgG korral on IgA negatiivne, siis seroloogiline viide infektsioonile puudub ning positiivne IgA viitab infektsioonile. Kui piiripealse IgG korral jääb ka IgA piiripealseks on tulemus selguseta.

Legionella pneumophila Ag uriinis on kiirtest, mis on näidustatud legionelloosi esmaseks skriininguks eeskätt juhtudel kui uuringumaterjali saamine alumistest hingamisteedest on raskendatud. Kuna test määrab vaid serotüüp 1-te jäävad selle testiga teised legionella serotüübid määramata, mistõttu on testi soovitav kombineerid NAT uuringuga.

Aeroobne külv rögast, aeroobne külv trahheaaspiraadist või aeroobne külv bronhiaspiraadist on näidustatud kopsupõletiku kahtlusel iseseisva uuringuna või ka kombineerituna hingamisteede bakterite DNA paneeliga (Chlamydophila pneumoniae, Mycoplasma pneumoniae, Legionella pneumophila, Bordetella pertussis, Bordetella parapertussis, Streptococcus pneumoniae ja Haemophilus influenzae). Võrreldes DNA paneeliga võimaldab külv määrata laia spektrit aeroobseid kopsupõletiku tekitajaid, hinnata nende antibiootikumtundlikust ning sisaldades Grami mikroskoopiat hinnata ka röga kvaliteeti (kas tegemist alumistest hingamisteedest pärit materjaliga või süljega) ning põletiku esinemist. Samas aeroobne külv ei tuvasta raskesti kultiveeritavaid hingamisteede patogeene (Chlamydophila pneumoniae, Mycoplasma pneumoniae, Legionella pneumophila, Bordetella pertussis, Bordetella parapertussis) mis sisalduvad hingamisteede bakterite DNA paneelis. Streptococcus pneumoniae või Haemophilus influenzae poolt põhjustatud infektsiooni korral täiendab külv DNA paneeli võimaldades määrata nimetatud bakterite antibiootikumtundlikkust.

Olulisemad kopsupõletikku põhjustavad mikroobid sõltuvalt patsiendi east ja riskifaktoritest ning nende tuvastatavus aeroobse külviga on toodud Tabelis 3 allpool.

Tabel 3. Kopsupõletikku põhjustavad mikroobid sõltuvalt patsiendi east ja nende tuvastatavus NAT või aeroobse/anaeroobse külviga.

Vanus / riskifaktor Sagedasemad tekitajad Tuvastatavus aeroobse külviga
<6 nädalat Streptococcus agalactiae Jah
Escherichia coli Jah
6 nädalat – 18 a Respiratoorsed viirused Ei, vaid NAT paneel
Mycoplasma pneumoniae Ei, vaid NAT paneel
Chlamydophila pneumoniae Ei, vaid NAT paneel
Streptococcus pneumoniae*** Jah
Täiskasvanud <65 a Mycoplasma pneumoniae Ei, vaid NAT paneel
Chlamydophila pneumoniae Ei, vaid NAT paneel
Streptococcus pneumoniae*** Jah
Streptococcus pyogenes Jah
Respiratoorsed viirused Ei, vaid NAT paneel
Täiskasvanud ≥65 a Streptococcus pneumoniae*** Jah
Haemophilus influenzae Jah
Gram-negatiivne pulkbakter* Jah
Respiratoorsed viirused Ei, vaid NAT paneel
Pseudomonas spp. Jah
Moraxella catarrhalis Jah
Staphylococcus aureus Jah
Legionella pneumophila Ei, vaid NAT paneel
Haiglatekkene pneumoonia Gram-negatiivne pulkbakter* Jah
Klebsiella pneumoniae Jah
Pseudomonas spp. Jah
Staphylococcus aureus Jah
Immuunpuudulikkusega patsient Gram-negatiivne pulkbakter* Jah
Streptococcus pneumoniae*** Jah
Seened** Jah, kuid soovitatav seente külv
Nocardia spp. Jah, kahtlus märkida saatekirjale
Pneumocystis jirovecii Ei
Aspiratsioon Anaeroobid Ei (anaeroobne külv aspireeritud materjalist)
Alkohoolik Klebsiella pneumoniae Jah
Streptococcus pneumoniae*** Jah
Anaeroobid Ei (anaeroobne külv aspireeritud materjalist)
Intravenoosne süstija Staphylococcus aureus Jah
Viirusinfektsioonijärgselt Staphylococcus aureus**** Jah

*teised enterobkaterid (Proteus spp, Enterobacter spp jt) ja mitte-fermenteerivad bakteried (Acinetobacter spp, Neisseria spp jt)
** Aspergillus spp, Candida spp, Fusarium spp, Cryptococcus neoformans jt
*** Streptococcus pneumoniae on keskkonnatekkese kopsupõletiku sagedaseim tekitaja.
**** Staphylococcus aureus on sagedaseim viirusinfektsioonijärgse kopsupõletiku tekitaja (eriti vanuritel).

Aeroobse külvi tõlgendus:

Röga on soovitav materjal alumiste hingamisteede bakteriaalsete infektsioonide diagnoosimiseks, kuid tuleb arvestada, et see on sageli kontamineerunud materjaliga ülemistest hingamisteedest.

Bronhiaspiraat (võetud bronhoskoopia käigus) ja trahheaaspiraat (võetud intubeeritud patsiendilt) on eelistatud diagnostilised materjalid haiglatekkese pneumoonia (HAP) ja ventilaatorpneumoonia (VAP) diagnoosimisel.

Kuna vastsündinutel, imikutel ja väikelastel pole sageli võimalik saada röga väljaköhimise teel, aspireeritakse neil proovimaterjali ülemistest hingamisteedest.

Enne aeroobse külvi hindamist hinnatakse esmalt hingamisteede materjali kvaliteeti mikroskoopial (Gram-värving):

  • Kui mikroskoopial esineb ≥10 lameepiteelirakku ja <10 polümorfonukleaarse leukotsüüdi (PMN), näitab see proovimaterjali madalat kvaliteeti. Lameepiteelide rohke leid viitab, et materjal on kontamineerunud süljega ning külvis esinev kasv pärineb suuõõnest ning külvi leid on kliiniliselt ebaoluline.
  • Kui mikroskoopial esineb <10 lameepiteelirakku ja >10 või >25  polümorfonukleaarse leukotsüüdi (PMN), viitab see proovimaterjali heale kvaliteedile. Lameepiteelide vähene leid ja PMN rohke leid näitab, et materjal pärineb alumistest hingamisteedest ning külvis hinnatakse patogeensete mikroobide esinemist.
  • Kui mikroskoopial esineb ≥10 lameepiteelirakku, kuid >25  polümorfonukleaarse leukotsüüdi (PMN),  viitab see proovimaterjali heale kvaliteedile. PMN rohke leid näitab, et materjal pärineb valdavalt alumistest hingamisteedest ning külvis hinnatakse patogeensete mikroobide esinemist.

Mikroskoopia annab ka esmase info domineeriva bakteri morfoloogiast ning aitab külvi tulemuse interpreteerimisel.

Neutropeenilistel patsientidel, eriti kui neutrofiilide arv on väga madal, ei pruugi mikroskoopial esineda leukotsüütide tõusu.

Patogeenset mikroobide esinemine aeroobses külvis viitab infektsioonile.

Rögast anaeroobseid baktereid ei määrata, kuna materjal on kontamineerunud ülemiste hingamisteede normaalsesse mikrobiootasse kuuluvate anaeroobidega.

Patogeensete mikroobide kasvu puudumine külvis ei tähenda alati infektsiooni puudumist.

Valenegatiivse külvi võimalikud põhjused:

  • Alustatud antibiootikumravi,
  • Teised tekitajad: viirused, seened, parasiidid
  • Raskesti kultiveeritavad rakusisesed mikroorganismid (Mycoplasma, Chlamydophila),
  • Tavasöötmetel mitte kasvavad patogeenid (mükobakterid, Bordetella, Legionella)

Mükobakterite (sh mittetuberkuloossete) tuvastamiseks on vajalik tellida eraldi suunatud uuringud.

Alumiste hingamisteede infektsioonide puhul jääb aeroobse külviga tekitaja leidmata 40 – 60%-l juhtudest.

Kirjandusallikad:

    1. Sagedasemate hingamis- ja kuseteede infektsioonide ambulatoorne diagnostika ja ravi. Tervisekassa; 2023. [Internet]. [vaadatud 26.01.2026]. Saadaval: https://www.ravijuhend.ee/tervishoiuvarav/juhendid-gp/32/sagedasemate-hingamis-ja-kuseteede-infektsioonide-ambulatoorne-diagnostika-ja-ravi
    2. Serigstad S, Knoop ST, Markussen DL, et al. Diagnostic utility of oropharyngeal swabs as an alternative to lower respiratory tract samples for PCR-based syndromic testing in patients with community-acquired pneumonia. J Clin Microbiol. 2023;61:e00505-23. doi:10.1128/jcm.00505-23.
    3. Räty R, Rönkkö E, Kleemola M. Sample type is crucial to the diagnosis of Mycoplasma pneumoniae pneumonia by PCR. J Med Microbiol. 2005;54(3):207–11. doi:10.1099/jmm.0.45888-0.
    4. Cho M‑C, Kim H, An D, Lee M, Noh S‑A, Kim M‑N, Chong YP, Woo JH. Comparison of sputum and nasopharyngeal swab specimens for molecular diagnosis of Mycoplasma pneumoniae, Chlamydophila pneumoniae, and Legionella pneumophila. Ann Lab Med. 2012;32(2):133–8. doi:10.3343/alm.2012.32.2.133.
    5. Wang L, Yang S, Yan X, Liu T, Feng Z, Li G. Comparing the yield of oropharyngeal swabs and sputum for detection of 11 common pathogens in hospitalized children with lower respiratory tract infection. Virol J. 2019;16:166. doi:10.1186/s12985-019-1177-x.
SYNLAB Eesti
Privacy Overview

This website uses cookies so that we can provide you with the best user experience possible. Cookie information is stored in your browser and performs functions such as recognising you when you return to our website and helping our team to understand which sections of the website you find most interesting and useful.