Hingamisteede viirusinfektsioonid on ühed sagedasemad infektsioonhaigused, mida esineb lastel keskmiselt 4–6 ja täiskasvanutel 1–3 episoodi aastas. Kuigi need võivad esineda aastaringselt, on nakatumise sagedus enamiku viiruste puhul kõrgeim sügisest kevadeni. Enamasti kulgeb haigus kerge ülemiste hingamisteede rinosinusiidina (nn külmetushaigus), kuid haaratud võivad olla ka alumised hingamisteed (bronhiit, bronhioliit, kopsupõletik ehk pneumoonia). Viirusinfektsiooni tüsistustena võivad tekkida hingamispuudulikkus või bakteriaalne superinfektsioon (bakteriaalne rinosinusiit, keskkõrvapõletik, kopsupõletik jne).
Hingamisteede bakteriaalsed patogeenid põhjustavad infektsioone nii ülemistes (rinosinusiit, keskkõrvapõletik) kui ka alumistes hingamisteedes (bronhiit, kopsupõletik).
Kuigi haigussümptomite alusel on mõnikord võimalik eristada viiruslikke ja bakteriaalseid hingamisteede infektsioone, võib täpsustavaks diagnostikaks olla vaja laboratoorseid uuringuid.
Haigustekitaja kindlakstegemine on oluline ravi määramisel nii mitmete viiruslike (gripp, COVID-19) kui ka enamiku bakteriaalsete infektsioonide korral. Lisaks on diagnostika vajalik infektsioonikontrolli ja haiguste epidemioloogilise seire eesmärgil.
Bakteriaalsete hingamisteede infektsioonide diagnostikat ja ravi on käsitletud vastavas Eesti ravijuhendis.
Peamiste viiruslike (Tabel 1) ja bakteriaalsete (Tabel 2) haigustekitajate diagnostika, kliinilised nähud, ning inkubatsiooniajad. Lisaks tabelis loetletud viirustele võivad alumiste hingamisteede infektsioone põhjustada enteroviirused (ehho- ja Coxsackie viirused), herpesviirused (lihtherpes, tuulerõuge- ja tsütomegaloviirus), bokaviirused ja leetriviirus.
Tabel 1. Viiruslike haigustekitajate diagnostika, leviku teed, kliinilised nähud ja inkubatsiooniajad
| NAT diagnostika | Viirus | Leviku viis | Sündroomid (sümptomid) | Riskirühmad | Keskmine inkubatsiooniaeg | |
|
A-, B-gripi viiruse, RSV, SARS-CoV-2 RNA paneel
|
Hingamisteede viiruste RNA/DNA paneel
|
A gripi (e Influenza A) viirus | Piisknakkus, ka kontamineeritud käte ja pindadega | Gripp, primaarne ja sekundaarne pneumoonia (kõrge palavik, lihasvalu, köha, väsimus) | Eakad, rasedad, krooniliste haigustega isikud | 1–4 päeva |
| B- gripi (e Influenza B) viirus | Piisknakkus, ka kontamineeritud käte ja pindadega | Gripp – sarnane Influenza A-le, kuid tavaliselt kergem | Lapsed, eakad, immuunpuudulikkusega isikud | 1–4 päeva | ||
| RSV (respiratoor-süntsütiaalne viirus) | Piisknakkus, lähikontakt | Bronhioliit, pneumoonia (köha, vilistav hingamine, palavik) | Imikud, eakad, krooniliste haigustega isikud | 4–6 päeva | ||
| SARS-CoV-2 (raskekujuline respiratoorse sündroomiga koroonaviirus) | Piisknakkus, aerosool, pindade kaudu | COVID-19, ARDS ehk äge respiratoorse distressi sündroom (palavik, köha, väsimus, maitse-/lõhnataju kadumine, hingamisraskused) | Eakad, krooniliste haigustega ja immuunpuudulikkusega isikud | 5–6 (2–14 ) päeva | ||
| Metapneumoviirus | Piisknakkus, lähikontakti kaudu | Bronhioliit, pneumoonia, rinosinusiit (köha, nohu, palavik, hingamisraskused) | Imikud, eakad, immuunpuudulikkusega isikud | 3–6 päeva | ||
| Paragripi (parainfluenza) viirus | Piisknakkus | Larüngiit, bronhioliit, krupp, rinosinusiit (köha, nohu, palavik) | Imikud, väikelapsed, eakad | 2–6 päeva | ||
| Adenoviirus | Piisknakkus, fekaal-oraalselt | Farüngiit, gastroenteriit, konjunktiviit (kurguvalu, palavik, silmade punetus, kõhulahtisus) | Lapsed, sõjaväelased, immuunpuudulikkusega isikud | 2–14 päeva | ||
| Rinoviirus | Piisknakkus, pindade kaudu | Rinosinusiit (nohu, kurguvalu, kerge köha) | Kõik vanuserühmad, eriti lapsed | 1–3 päeva | ||
Tabel 2. Bakteriaalsete haigustekitajate diagnostika, leviku teed, kliinilised nähud ja inkubatsiooniajad
| NAT diagnostika | Muud testid | Bakter | Leviku viis | Sündroomid (sümptomid) | Riskirühmad | Keskmine inkubatsiooniaeg | |
| Chlamydophila pneumoniae, Mycoplasma pneumoniae, Legionella pneumophila DNA paneel | Hingamisteede bakterite DNA paneel | Antikehad (IgG + IgM + IgA) | Mycoplasma pneumoniae | Aerosoolid, piisknakkus | Bronhiit, bronhioliit, atüüpiline pneumoonia, (aeglaselt progresseeruvad nähud: palavik, peavalu, väsimus, kuiv köha, kurguvalu, nohu) | Koolilapsed, noored täiskasvanud, astma või immuunpuudulikkusega isikud | 2–3 nädalat |
| Chlamydophila pneumoniae | Piisknakkus, kontamineeritud pindadega | Bronhiit, atüüpiline pneumoonia (kurguvalu, köha, madal palavik) | Koolilapsed, noored, vanemad täiskasvanud korduvate infektsioonidega | 3–4 nädalat | |||
| Antigeenitest | Legionella pneumophila | Aerosoolid saastunud veest (konditsioneerid, dušid) | Legionelloos, Pontiaci palavik (kõrge palavik, köha, hingamisraskused, lihasvalu, peavalu, seedetrakti sümptomid) | Eakad, suitsetajad, krooniliste haigustega ja immuunpuudulikkusega isikud | 5–6 päeva (2–14) | ||
| Bordetella pertussis, Bordetella parapertussis DNA paneel | Ab paneel | Bordetella pertussis | Piisknakkus | Larüngotrahheobronhiit/läkaköha (katarraalne staadium: nohu, köha, palavik, kurguvalu; seejärel paroksüsmaalne staadium: köhahood, oksendamine) | Imikud, väikelapsed, madala immuunkaitsega isikud | 7–10 päeva (5–21) | |
| Bordetella parapertussis | Piisknakkus | Paraläkaköha (läkaköha taoline, kuid tavaliselt kergem ja lühem paroksüsmaalne köha) | Imikud (< 6 kuud), sagedamini kergetel juhtudel, immuunpuudulikkusega isikud | 7–10 päeva (5–21) | |||
| Aeroobne külv röga proovist | Streptococcus pneumoniae | Piisknakkus | Pneumoonia (kõrge palavik, külmavärinad, rögaeritus, hingamisraskused, rinnavalu, väsimus), bakterieemia, meningiit, keskkõrvapõletik, bakteriaalne | Väikelapsed, eakad, aspleenia, immuunpuudulikkusega ja krooniliste haigustega isikud | 1–3 päeva | ||
| Haemophilus influenzae | Piisknakkus | Invasiivne serotüüp B: meningiit, epiglotiit, pneumoonia; teised serotüübid: keskkõrvapõletik, bronhiit | < 5-aastased lapsed, ≥ 65-aastased, aspleenia, HIV-i ja immuunpuudulikkusega isikud, kemoteraapiat saavad isikud | 2–4 päeva | |||
| Aeroobsed bakterid | vt Tabel 3 | ||||||
Laboratoorne diagnostika
Hingamisteede viirusinfektsioonide diagnostikas on eelistatuim meetod (nagu PCR, RT-PCR). Kuna erinevate viiruste põhjustatud sümptomid on sarnased, siis kasutatakse paneeldiagnostikat, mis sisaldab olulisemaid ja sagedasemaid haigustekitajaid.
A-, B-gripi viiruse, RSV, SARS-CoV-2 RNA paneel sisaldab viiruseid, mis on olulisemad nii epidemioloogiliselt (haiguspuhangud, pandeemiad), kliiniliselt (võimalik raskem kulg ja tüsistused) kui ka ravi ja ennetamise mõttes (olemas ravimid ja vaktsiinid).
Hingamisteede viiruste RNA/DNA paneel sisaldab lisaks eelnevatele (A- ja B-gripi viiruse, RSV, SARS-CoV-2) ka teisi sageli hingamisteede infektsioone põhjustavaid viiruseid (metapneumo-, paragripi-, adeno- ja rinoviirus).
Proov uuringuks tuleks võtta võimalikult vara pärast sümptomite teket, kuna viiruste eritumine organismist on siis reeglina kõrgeim (sümptomite tekkest kuni 5. päevani). Sel ajal on haigestunu ka kõige nakkusohtlikum.
Hingamisteede bakteriaalsete infektsioonide diagnostikas on kasutusel NAT, antikehade/antigeeni määramine ja külv.
Vastavalt kehtivale Eesti diagnostika ja ravi juhendile on Chlamydophila pneumoniae, Mycoplasma pneumoniae, Legionella pneumophilaDNA paneel atüüpilise kopsupõletiku kahtluse korral esmane diagnostika. Nimetatud patogeenide korral on NAT-diagnostika kõige tundlikum haiguse 1.–2. nädala jooksul. Kui haigustekitajate eritumine hingamisteedest väheneb, langeb ka meetodi tundlikkus. Soovituslikuks uuringumaterjaliks on röga ja muud alumistest hingamisteedest pärit materjalid (bronhiaspiraat, trahheaaspiraat). Ninaneelu- ja kurgukaapest tehtud uuringud on oluliselt madalama tundlikkusega ning annavad sageli valenegatiivseid tulemusi, mistõttu neid materjale diagnostikaks ei soovitata.
Bordetella pertussis, Bordetella parapertussis DNA paneel on esmane diagnostiline test läkaköha ja paraläkaköha kahtlusel. NAT-diagnostika on kõige tundlikum haiguse katarraalses staadiumis (1–2 nädalat alates sümptomitest). Pärast 3. haigusnädalat väheneb meetodi tundlikkus oluliselt. Diagnostika tuleks teostada võimalikult vara, et saaks kohe alustada antibakteriaalset ravi. Uuringud on näidanud, et antibiootikumravi kergendab haiguse kulgu, kui seda alustada 1. haigusnädala jooksul. Kui ravi alustada hiljem – kuni 3 nädala jooksul –, siis see haiguse kulgu ei mõjuta, aga võib vähendada patsiendi nakkusohtlikkust ja seega haiguse levikut. Hilisem antibiootikumravi (3–6 nädalat pärast sümptomite teket) on näidustatud vaid teatud riskirühmadel.
Uuritavateks materjalideks sobivad lisaks rögale ka ninaneelukaabe ja kurgukaabe.
Hingamisteede bakterite DNA paneel sisaldab lisaks eelnevate paneelide patogeenidele (Chlamydophila pneumoniae, Mycoplasma pneumoniae, Legionella pneumophila, Bordetella pertussis, Bordetella parapertussis) ka tüüpilise kopsupõletiku tekitajaid: Streptococcus pneumoniae ja Haemophilus influenzae. See paneel on näidustatud kopsupõletiku jt ägedate bakteriaalsete alumiste hingamisteede infektsioonide diagnostikaks nii iseseisvalt kui ka kombineeritult aeroobse külviga rögast.
Streptococcus pneumoniae ja Haemophilus influenzae uuringud on samuti näidustatud haiguse ägedas staadiumis. Eelistatud on alumistest hingamisteedest pärit uuringumaterjalid (röga, trahhea- või bronhiaspiraat), kuid vanematel patsientidel võib ka neelukaabe anda piisavalt tundliku ja spetsiifilise tulemuse. Kuna lastel on ninaneel sageli koloniseeritud S. pneumoniae ja H. influenzae poolt, tuleb nende puhul ninaneelust saadud positiivsetesse tulemustesse suhtuda kriitiliselt.
Mycoplasma pneumoniae IgA, IgG, IgM ja Chlamydophila pneumoniae IgA, IgG, IgM
Antikehade määramine on näidustatud haiguse retrospektiivseks kinnitamiseks, kuna antikehad tekivad 2.–3. haigusnädalaks. IgA, IgG ja IgM antikehi tuleks määrata alati koos ning vajadusel teostada ka kordusuuring 2–3 nädala pärast, et hinnata antikehade hulkade dünaamikat. Kuna tegemist on kaudse diagnostikaga, mis määrab inimese immuunvastuse, tuleb tõlgendamisel arvestada ka indiviidi immuunseisundiga. Antikehade määramine ei sobi raviefektiivsuse hindamiseks.
Tulemuse tõlgendamine: IgA tekib nii primaarse kui ka reinfektsiooni puhul ning positiivne tulemus viitab käimasolevale või hiljutisele infektsioonile.
IgM positiivne tulemus võib viidata nii käimasolevale kui ka hiljutisele infektsioonile, kuid täiskasvanutel reinfektsiooni korral IgM antikehi ei teki ning lastel jääb IgM ka esmasinfektsiooni puhul sageli negatiivseks. IgM püsib keskmiselt 6 kuud.
IgG positiivne tulemus võib viidata nii hiljutisele kui ka varem põetud infektsioonile ning võib positiivsena püsida aastaid pärast haigestumist.
Bordetella pertussis Ab paneel
Läkaköha toksiinivastaste antikehade määramisel põhinevad uuringud on näidustatud alates 2.–3. haigusnädalast, kui NAT-meetodiga haigustekitajat enam tuvastada ei ole võimalik, kuid IgG- ja IgA-tüüpi antikehad on juba tekkinud. Kuna tegemist on kaudse diagnostikaga, mis määrab inimese immuunvastuse, tuleb tõlgendamisel arvestada ka indiviidi immuunseisundiga. Antikehade määramine ei sobi raviefektiivsuse ega paranemise hindamiseks. Uuring ei ole näidustatud, kui vaktsineerimisest on möödas alla 1 aasta, kuid ka 1–3 aastat pärast vaktsineerimist võib tulemuse tõlgendamine olla problemaatiline. Seetõttu tuleb saatekirjale lisada info nii viimase vaktsineerimise kui ka sümptomite algusaja kohta.
Tulemuse tõlgendamine: IgG antikehad tekivad alates 2.–3. nädalast ja saavutavad maksimaalse hulga 6.–8. nädalaks. IgA tekib alates 1.–2. haigusnädalast ja püsib keskmiselt 6–24 kuud.
Kui hinnatakse 3–4-nädalase vahega võetud paarisseerumite tulemust, siis PT IgG 100% tõus või langus viitab infektsioonile.
Üksikproovi hindamisel viitab positiivne IgG tulemus infektsioonile ning negatiivse tulemuse korral seroloogiline viide läkaköhale puudub. Piiripealse IgG tulemuse korral tuleks hinnata IgA antikehade taset. Kui piiripealse IgG korral on IgA negatiivne, siis seroloogiline viide infektsioonile puudub ning positiivne IgA viitab infektsioonile. Kui piiripealse IgG korral jääb ka IgA piiripealseks, on tulemus selguseta.
Legionella pneumophila Ag uriinis on kiirtest, mis on näidustatud legionelloosi esmaseks skriininguks eeskätt juhtudel, kui uuringumaterjali saamine alumistest hingamisteedest on raskendatud. Kuna test määrab vaid serotüüpi 1, jäävad selle testiga teised Legionella serotüübid määramata, mistõttu on testi soovitatav kombineerida NAT-uuringuga.
Aeroobne külv rögast, aeroobne külv trahheaaspiraadist või aeroobne külv bronhiaspiraadist
on näidustatud kopsupõletiku kahtlusel iseseisva uuringuna või ka kombineerituna hingamisteede bakterite DNA paneeliga (Chlamydophila pneumoniae, Mycoplasma pneumoniae, Legionella pneumophila, Bordetella pertussis, Bordetella parapertussis, Streptococcus pneumoniae ja Haemophilus influenzae). Võrreldes DNA paneeliga võimaldab külv määrata laia spektrit aeroobseid kopsupõletiku tekitajaid, hinnata nende antibiootikumtundlikkust ning Grami mikroskoopia abil hinnata ka röga kvaliteeti (kas tegemist on alumistest hingamisteedest pärit materjaliga või süljega) ning põletiku esinemist. Samas ei tuvasta aeroobne külv raskesti kultiveeritavaid hingamisteede patogeene (Chlamydophila pneumoniae, Mycoplasma pneumoniae, Legionella pneumophila, Bordetella pertussis, Bordetella parapertussis), mis sisalduvad hingamisteede bakterite DNA paneelis. Streptococcus pneumoniae või Haemophilus influenzae põhjustatud infektsiooni korral täiendab külv DNA paneeli, võimaldades määrata nimetatud bakterite antibiootikumtundlikkust.
Olulisemad kopsupõletikku põhjustavad mikroobid sõltuvalt patsiendi east ja riskifaktoritest ning nende tuvastatavus aeroobse külviga on toodud allpool Tabelis 3.
Tabel 3. Kopsupõletikku põhjustavad mikroobid sõltuvalt patsiendi east ja nende tuvastatavus NAT-iga või aeroobse/anaeroobse külviga
| Vanus / riskifaktor | Sagedasemad tekitajad | Tuvastatavus aeroobse külviga |
|---|---|---|
| <6 nädalat | Streptococcus agalactiae | Jah |
| Escherichia coli | Jah | |
| 6 nädalat – 18 a | Respiratoorsed viirused | Ei, vaid NAT paneel |
| Mycoplasma pneumoniae | Ei, vaid NAT paneel | |
| Chlamydophila pneumoniae | Ei, vaid NAT paneel | |
| Streptococcus pneumoniae*** | Jah | |
| Täiskasvanud <65 a | Mycoplasma pneumoniae | Ei, vaid NAT paneel |
| Chlamydophila pneumoniae | Ei, vaid NAT paneel | |
| Streptococcus pneumoniae*** | Jah | |
| Streptococcus pyogenes | Jah | |
| Respiratoorsed viirused | Ei, vaid NAT paneel | |
| Täiskasvanud ≥65 a | Streptococcus pneumoniae*** | Jah |
| Haemophilus influenzae | Jah | |
| Gram-negatiivne pulkbakter* | Jah | |
| Respiratoorsed viirused | Ei, vaid NAT paneel | |
| Pseudomonas spp. | Jah | |
| Moraxella catarrhalis | Jah | |
| Staphylococcus aureus | Jah | |
| Legionella pneumophila | Ei, vaid NAT paneel | |
| Haiglatekkene pneumoonia | Gram-negatiivne pulkbakter* | Jah |
| Klebsiella pneumoniae | Jah | |
| Pseudomonas spp. | Jah | |
| Staphylococcus aureus | Jah | |
| Immuunpuudulikkusega patsient | Gram-negatiivne pulkbakter* | Jah |
| Streptococcus pneumoniae*** | Jah | |
| Seened** | Jah, kuid soovitatav seente külv | |
| Nocardia spp. | Jah, kahtlus märkida saatekirjale | |
| Pneumocystis jirovecii | Ei | |
| Aspiratsioon | Anaeroobid | Ei (anaeroobne külv aspireeritud materjalist) |
| Alkohoolik | Klebsiella pneumoniae | Jah |
| Streptococcus pneumoniae*** | Jah | |
| Anaeroobid | Ei (anaeroobne külv aspireeritud materjalist) | |
| Intravenoosne süstija | Staphylococcus aureus | Jah |
| Viirusinfektsiooni järgselt | Staphylococcus aureus**** | Jah |
*teised enterobakterid (Proteus spp., Enterobacter spp. jt) ja mittefermenteerivad bakterid (Acinetobacter spp., Neisseria spp. jt)
** Aspergillus spp., Candida spp., Fusarium spp., Cryptococcus neoformans jt
***Streptococcus pneumoniae on keskkonnatekkese kopsupõletiku sagedaseim tekitaja.
****Staphylococcus aureus on sagedaseim viirusinfektsiooni järgse kopsupõletiku tekitaja (eriti vanuritel).
Aeroobse külvi tõlgendus:
Röga on soovitatav materjal alumiste hingamisteede bakteriaalsete infektsioonide diagnoosimiseks, kuid tuleb arvestada, et see on sageli kontamineerunud materjaliga ülemistest hingamisteedest.
Bronhiaspiraat (võetud bronhoskoopia käigus) ja trahheaaspiraat (võetud intubeeritud patsiendilt) on eelistatud diagnostilised materjalid haiglatekkese pneumoonia (HAP) ja ventilaatorpneumoonia (VAP) diagnoosimisel.
Kuna vastsündinutel, imikutel ja väikelastel pole sageli võimalik saada röga väljaköhimise teel, aspireeritakse neil proovimaterjali ülemistest hingamisteedest.
Enne aeroobse külvi hindamist hinnatakse esmalt hingamisteede materjali kvaliteeti Gram-värvinguga mikroskoopial:
- Kui mikroskoopial esineb ≥ 10 lameepiteelirakku ja < 10 polümorfonukleaarset leukotsüüti (PMN), näitab see proovimaterjali madalat kvaliteeti. Lameepiteelide rohke leid viitab, et materjal on kontamineerunud süljega, külvis esinev kasv pärineb suuõõnest ning külvi leid on kliiniliselt ebaoluline.
- Kui mikroskoopial esineb < 10 lameepiteelirakku ja > 10 või > 25 polümorfonukleaarset leukotsüüti (PMN), viitab see proovimaterjali heale kvaliteedile. Lameepiteelide vähene ja PMN-i rohke leid näitab, et materjal pärineb alumistest hingamisteedest ning külvis hinnatakse patogeensete mikroobide esinemist.
- Kui mikroskoopial esineb ≥ 10 lameepiteelirakku, kuid > 25 polümorfonukleaarset leukotsüüti (PMN), viitab see proovimaterjali heale kvaliteedile. PMN-i rohke leid näitab, et materjal pärineb valdavalt alumistest hingamisteedest ning külvis hinnatakse patogeensete mikroobide esinemist.
Mikroskoopia annab ka esmase info domineeriva bakteri morfoloogiast ning aitab külvi tulemuse tõlgendamisel.
Neutropeenilistel patsientidel – eriti kui neutrofiilide arv on väga madal –, ei pruugi mikroskoopial esineda leukotsüütide tõusu.
Patogeensete mikroobide esinemine aeroobses külvis viitab infektsioonile.
Rögast anaeroobseid baktereid ei määrata, kuna materjal on kontamineerunud ülemiste hingamisteede normaalsesse mikrobiootasse kuuluvate anaeroobidega.
Patogeensete mikroobide kasvu puudumine külvis ei tähenda alati infektsiooni puudumist.
Valenegatiivse külvi võimalikud põhjused:
- Alustatud antibiootikumravi
- Teised tekitajad: viirused, seened, parasiidid
- Raskesti kultiveeritavad rakusisesed mikroorganismid (Mycoplasma, Chlamydophila)
- Tavasöötmetel mittekasvavad patogeenid (mükobakterid, Bordetella, Legionella)
Mükobakterite (sh mittetuberkuloossete) tuvastamiseks on vajalik tellida eraldi suunatud uuringud.
Alumiste hingamisteede infektsioonide puhul jääb aeroobse külviga tekitaja leidmata 40–60% juhtudest.
Kirjandusallikad:
-
- Sagedasemate hingamis- ja kuseteede infektsioonide ambulatoorne diagnostika ja ravi. Tervisekassa; 2023. [Internet]. [vaadatud 26.01.2026]. Saadaval: https://www.ravijuhend.ee/tervishoiuvarav/juhendid-gp/32/sagedasemate-hingamis-ja-kuseteede-infektsioonide-ambulatoorne-diagnostika-ja-ravi
- Serigstad S, Knoop ST, Markussen DL, et al. Diagnostic utility of oropharyngeal swabs as an alternative to lower respiratory tract samples for PCR-based syndromic testing in patients with community-acquired pneumonia. J Clin Microbiol. 2023;61:e00505-23. doi:10.1128/jcm.00505-23.
- Räty R, Rönkkö E, Kleemola M. Sample type is crucial to the diagnosis of Mycoplasma pneumoniae pneumonia by PCR. J Med Microbiol. 2005;54(3):207–11. doi:10.1099/jmm.0.45888-0.
- Cho M‑C, Kim H, An D, Lee M, Noh S‑A, Kim M‑N, Chong YP, Woo JH. Comparison of sputum and nasopharyngeal swab specimens for molecular diagnosis of Mycoplasma pneumoniae, Chlamydophila pneumoniae, and Legionella pneumophila. Ann Lab Med. 2012;32(2):133–8. doi:10.3343/alm.2012.32.2.133.
- Wang L, Yang S, Yan X, Liu T, Feng Z, Li G. Comparing the yield of oropharyngeal swabs and sputum for detection of 11 common pathogens in hospitalized children with lower respiratory tract infection. Virol J. 2019;16:166. doi:10.1186/s12985-019-1177-x.